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科研支原体检测试剂盒
支原体快检试剂盒(探针法-科研版)
【产品货号及规格】
BPM 20-01 20 T/盒
【产品说明】
支原体(Mycoplasma):目前发现的最小的原核生物,据统计
约 15~35% 的细胞被支原体污染。支原体污染会改变宿主细胞的
结构与功能,易致实验结果不稳定,须对培养细胞定期进行支原
体检测。
本产品试剂盒采用多套引物探针在 FAM 通道检测支原体
DNA,采用一套引物探针在 VIC 通道检测内参 DNA,检测对象
为细胞培养的上清液或细胞本身。该试剂盒具有以下特点:
稳定:全程闭管操作,无交叉污染。
可靠:含内参基因,避免假阴性。
方便:操作简单,无需电泳步骤。
定量:以 Ct 值判断,可定量检测。
【运输及保存条件】
低温冷冻运输,-20 ℃保存,有效期 1 年。
【产品组分】
组分名称 装量 储存条件
Biowing
®MyqPCR
Reaction Mix1
200 μL×1 管 -20 ℃
Biowing
®MyPrimer&
Probe Mix2 冻干粉×1 管 -20 ℃,避光
Mycoplasma Positive Control 50 μL×1 管 -20 ℃
RNase Free Water 1 mL×1 管 -20 ℃
石蜡油 1 mL×1 管 -20 ℃
注:本试剂盒提供试剂,使用前先低速离心后小心开启。使
用时请上下轻柔颠倒十次混匀,避免起泡,并低速短暂离心后使
用。
【操作步骤】
1.试剂的复溶
Biowing
®MyPrimer&Probe Mix2 先12,000 rpm离心5 min,再
用179 μL/管RNase Free Water复溶,混匀1 min,瞬离,并常温放
置5-10 min后备用。
2.样本制备(自备)
样本可直扩,具体操作方法见附录2。
3.qPCR 反应体系及条件反应体系以20 µL为例:
1. 震荡混匀 qPCR Mix,低速离心,将管盖残留液体收集至管
底。
2. 向每孔反应管中分装 18 μL qPCR Mix。
3. 向已分装过 qPCR Mix 的反应管中加入15 μL石蜡油。
4. 向反应管中穿过石蜡油层加样,3000 rpm 瞬离5 s,加样示
例如下:
PCR 仪设置
以ABI 7500为例,选择TaqMan 探针法:
步骤 循环数 温度 时间
1 预变性 1 95 ℃ 30 s 2 变性
35
95 ℃ 15 s 退火 58 ℃ 1 min 延伸 72 ℃ 30 s 58 ℃延伸时收集荧光信号
通道选择:样本检测通道-FAM;内参检测通道-VIC 注:建议其他不同类型样本,先做适应性验证,因为不同样本杂
质性质不同。 【阈值设置】
以ABI 7500为例,扩增曲线选择 log 法,基线设置 3~15 个循环。
1.内参(VIC)阈值设定:以阴性对照定内参扩增曲线阈值,将内参
的 Ct 值定为 30±3。
2.支原体(FAM)阈值设定:以阳性对照定支原体扩增曲线阈值,
将支原体(FAM)的 Ct 值定为 26±3。 【结果判读】
根据支原体(FAM) Ct 值判定是否发生支原体污染,具体标准如下:
PCR 模板 支原体(FAM) Ct 值 判定说明
阳性对照
26±3 阳性成立
>29 阳性不成立
阴性对照
≥33 阴性成立
<33 阴性不成立
待测样品
(内参 Ct 值≤32)
≥33 阴性
<33 阳性
注:检测结果与其他方法检测结果矛盾时:
1.检查内参通道扩增是否正常,扩增曲线是否选择 log 法。
2.内参扩增不正常,表明 PCR 反应未正常进行,PCR 体系受到干
扰,需重复检测。
3.内参扩增正常,结合 Ct 值和扩增曲线形态判断。
4.无典型扩增曲线,可认为该样本为支原体阴性。有典型扩增曲
线,需重复检测。重复结果不一致判为阴性;结果一致,判为阳
性。 【注意事项】
由于 PCR 反应非常灵敏,实验操作中应注意以下事项,以免发生
DNA 污染:
1.建议阳性对照与待测样本、阴性对照在实验室的不同区域进行添
加,在 qPCR 反应板上阳性对照的排布应远离待测样本和阴性对照。
2.建议使用不同的移液器添加阳性对照与待测样本、阴性对照,并
使用带滤芯的枪头进行加样。
3.试剂盒开启后,阳性对照应与试剂 Mix、阴性对照分开存放。
4. qPCR 封膜时须反复压紧。
5.实验室环境须定期清除支原体。
组分/样品管
待测样品管
(µL)
阳性对照管
(µL)
阴性对照管
(µL) Biowing®MyqPCR
Reaction Mix1
10 10 10 Biowing®MyPrimer&
Probe Mix2
8 8 8 RNase Free Water 0 0 2 Sample 2 0 0 Mycoplasma Positive Control 0 2 0
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